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Identification et
dosage des principales drogues amphétaminiques clans le sang
total par chromatographie en phase gazeuse couplée à la
spectrométrie de masse (CPG-SM).
Determination of the principal illicit amphetamines in
whole blood by gas chromatography - mass spectrometry (GC-MS)
P. MARQUET *(1), G. LACHÂTRE (1), P
KINTZ (2), G. PEPIN (3), M. DEVEAUX (4), P MURA (5)
(1 ) Service de Pharmacologie et Toxicologie, CHRU Dupuytren,
LIMOGES
(2) Institut de Médecine Légale, STRASBOURG
(3) Laboratoire d'expertises Toxiab, PARIS
(4) Institut de Médecine Légale, LILLE
(5) Laboratoire de Biochimie et Toxicologie, CHU POITIERS
*Auteur à qui adresser la correspondance:
P. MARQUET, Service de Pharmacologie et Toxicologie - CHRU
Dupuytren - 87042 LIMOGES Cedex
RÉSUMÉ
Ce travail
propose une méthode d'identification et de dosage dans le sang
total de l'amphétamine (AM), de la méthamphétamine (MA), de la
méthylènedioxyamphétamine (MDA), de la
méthylènedioxyméthamphétamine (MDMA) et de la
méthylènedioxyéthylamphétamine (MDEA) par chromatographie en
phase gazeuse -spectrométrie de masse (CPG-SM), avec utilisation
d'un analogue deutéré de chaque analyse comme étalon interne.
Après extraction par le diéthyl oxyde en milieu basique,les
amphétamines sont dérivées par l'anhydride
heptafluorobutyrique (HFBA) puis l'extrait est purifié par
lavages successifs avec de l'eau désionisée puis avec du
NH4OHà 4 %. Les rendements d'extraction sont de 85,2 % pour AM,
90,9 % pour MA, 76,5 % pour MDA, 84 1 % pour MDMA et 63.6 % pour
MDEA. Après injection dans un injecteur de type splitless. La
séparation est effectuée par une colonne capillaire polaire HP
5 MS 30 m x 0,32mm . L'ionisation est réalisée par impact
électronique. Un ion par étalon interne et pour les analytes,
un ion de quantification et 2 ou 3 ions de confirmation ont été
sélectionnés pour l'acquisition. Les limites de détection sont
de 0.5 à 8 ng/mL selon les composés; la limite de
quantification est de 10 ng/mL à l'exception de la MA (20 ng/mL)
et de la MDA (50 ng/mL). La méthode estl inéaire pour tous les
composés jusqu'à 1000 ng/mL au moins, Elle est répétable et
reproductible dans cette gamme. L'absence d'interférences de la
part des principales autres amines sympathomimétiques
(éphédrine,pseudo-éphédrine,...) a été vérifiée.
Mots clés:Amphétamines, CPG-SM, sang total
SUMMARY
Amphetamine (AM), methamphetamine (MA), meth)nedioxyamphetamine
(MDA), methylenedioxymetha,phetamine (MDMA) and
methylenedioxyethylamphetamine (MDEA) were determined in whole
blood by GC-MS using a deuterated analog of each analyte internal
standard.
After a basic extraction
with diethylether the amphetamines were derivatized by
heptafluorobutyric antydrid (HFBA), then the extract was
successively washed with deionised water and with NH4 OH 4 %.
Extraction recoveries were 85.2 % for AM, 90.9 % for MA, 76.5 %
for MDA, 84.1 % for MDMA and 63.6 % for MDEA. The extract were
injected in a splitless-type injector, then separated on
non-polar HP 5 MS, 30 m x 0.32 i.d. capillary column.After
electron-impact ionisation, selected ions were monitored at m/z 240,
118, 91 for AM, m/z 254,210, 169, 91 for MA,
m/z 375,240,162,135 for MDA, m/z 389, 254,210,162
for MDMA and m/z 403, 268, 240 for MDEA.
Limit of detection were between 0.5 and 8 ng/mL. The limit of
quantification were 10 ng/mL, excepted for MA (20 ng/mL) and for
MDA (50 ng/mL). The method is linear to 1000 ng/mL or more.
Repetability and reproducibility are satisfactory over this range
. No interference from most common other sympathomimetic amines
(ephedrine, pseudoephedrine...) could be noted.
Key-words:
Amphetamines, GC-MS, whole blood
Introduction
Dans la perspective d'une éventuelle recherche de
stupéfiants dans le sang de conducteurs impliqués dans
un accident de la route, sur réquisition des forces de
l'ordre, la Commission "Drogues" de la S.F.T.A.
a décidé de proposer des techniques standardisées et
optimisées de dosage des quatre principales familles de
drogues illicites dans le sang total, par CPG-SM.
Ce travail présente
la technique, recommandée par la SFTA, de dosage des
principales molécules amphétaminiques illicites dans ce
milieu. II s'agit de la synthèse de diverses techniques de dosage des
amphétamines proposées par les auteurs et employées
dans leur laboratoire respectif (1, 2). Les molécules à
analyser ont été définies d'uncommun accord, Ce sont
celles qui sont le plus fréquemment employées par les
toxicomanes, susceptibles d'être contenues dans les
contrôles externes de qualité du dosage des drogues
dans le sang, qui seront bientôt proposées par la
Commission "Assurance Qualité" de la
S.F.T.A.:amphétamine (AM), méthamphétamine (MA),
méthylènedioxyamphétamine (MDA),
méthylènedioxyméthamphétamine |
Matériels
et méthodes
Réactifs
Le sulfate d'amphétamine, la méthamphétamine, la MDA et la
MDMA ont été achetées chez SIGMA (France), la MDEA et leurs
homologues pentadeutérés chez RADIAN (PROMOCHEM,France).Les
solvants et solutions suivantes: diéthyl oxyde, méthanol,
acétate d'éthyle, isopropanol, HCI, et NaOH, tous de qualité
Normapur, ainsi que l'acétate d'éthyle de qualité Chromanorm,
proviennent de chez PROLABO (France).L'ammoniaque NH4OH ACS est
un produit SIGMA (France). Le n-Hexane pour CLHP a été fourni
par CARLO ERBA REAGENTI (France). L'anhydride
heptafluorobutyrique (HFBA) est un produit PIERCE (SUPELCO,
France.)
Les solutions mères à 1 g/l
dans le méthanol des cinq amphétamines et à 100 mg/l des cinq
étalons internes deutérés, prêtes à l'emploi ou préparées
au laboratoire, sont conservées à + 4°C.Une solution fille
contenant les cinq analytes à 1 mg/l et une solution fille
contenant les cinq étalons internes à 5 mg/l sont préparées
dans l'acide chlorhydrique 0,2 N et conservées à + 4°C
(pendant une semaine au maximum).
Extraction
L'analyse est réalisée à partir de sang total, recueilli
avec ou sans anticoagulant. Le sang laqué (sang décongelé) est
également utilisable. Les amphétamines n'étant pas ou peu
glucuro- ou sulfo-conjuguées par le foie, aucune procédure
d'hydrolyse préalable n'est nécessaire.
A 1 ml de sang sont ajoutés 20
µl de solution fille d'EI à 5 mg/l, 0,5 ml de NaOH 1 N et 5 ml
de diéthyl oxyde, dans un tube en verre à fond rond de 15 ml.
L'extraction est réalisée par agitation pendant 15 min sur un
agitateur par retournement, puis centrifugation à 900 g pendant
5 min. La phase éthérée est alors transférée dans un tube en
verre de 10 ml à fond conique, contenant 100 µl de mélange
isopropanol/HCI (99/1, v: v), puis évaporée à 30° C sous
très faible courant d'azote. La dérivation est réalisée en
ajoutant à l'extrait sec 100 µl de HFBA et 50 µI d'acétate
d'éthyle et en laissant incuber 20 min à 70°C. Après
refroidissement, la phase organique est évaporée à 30°C sous
faib!e courant d'azote. L'extrait sec est repris par 400 µI
d'hexane et 200 µl d'eau purifiée, par agitation au vortex.
Après centrifugation pendant 5 mn, la phase aqueuse est rejetée
et 200 µl de NH4OH à 4 % sont rajoutés à la phase organique.
Après mélange au vortex et centrifugation, la phase organique
est transférée dans un autre tube à fond conique de 10 µI,
évaporée à sec puis l'extrait est repris par 50 µl d'acétate
d'éthyle. Une quantité de 1 µl est injectée dans le système
CPG/SM.
Des courbes de calibration
sont préparées avec chaque série, à partir de sang total
vierge, surchargé à 0, 20, 50, 100,200 et 500 ng/ml de chaque
analyte.Ces échantillons standards sont extraits dans les mêmes
conditions que les échantillons à doser.
Instrumentation
et procédurede dosage
La séparation est
réalisée à l'aide d'un chromatographe en phase gazeuse 5890
série II Hewlett-Packard, équipéd'un injecteur split/splitless
et d'une colonne capillaire greffée apolaire 5 % phényl - 95 %
méthyl siloxane HP 5 MS Hewlett Packard de 0,25 µm d'épaisseur
de film, 30 m x 0,32 mm di. utilisant de l'hélium comme gaz
vecteur. L'injecteur chauffé à 280°C est utilisé en mode
splitless (temps d'ouverture 30 s), La température du
chromatographe initialement de 60°C pendant 1 min, augmente de
15°C/mn jusqu'à 140°C, puis de 30 °C/mn jusqu'à 212 °C,
avec un palier de 3 mn, puis elle est portée à 285°C à raison
de 70 °C/mn, où elle est maintenue 3 mn. La pression du gaz
vecteur est régulée à 1 kg/m2 en têtede colonne. L'interface
est thermostatée à 260 °C. Le spectromètre de masse MSD 5972
Hewlett-Packard réalise l'ionisation par impact électronique à
70 eV et la détection en mode fragmentométrique. L'ensemble est
piloté par unmicroordinateur Vectra 486/33 VL Hewlett-Packard,
équipé du logiciel HPCHEM pour Windows, qui sert également à
l'acquisition, à l'enregistrement et au traitement des données
chromatographiques et spectrométriques. Les ions de
quantification utilisés pour les étalons internes ainsi que les
ions de quantification et de confirmation utilisés pour les
molécules à doser sont rapportés dans le tableau 1. Pour ces
dernières ont été exclus les ions appartenant également au
spectre de masse de leur homologue deutéré. Les analyses sont
identifiés par leur indice de rétention par rapport à leur
étalon interne, et par le rapport de leurs ions de confirmation
à leur ion de quantification.
Validation
Le rendement d'extraction a été calculé à partir de sang
total surchargé à 100 ng/ml. La répétabilité de la technique
a été calculée, à partir de sang total surchargé à 20 ng/ml
et à 500 ng/ml, par extraction et dosage de cinq aliquotes de
chaque surcharge le même jour. L'étude de la reproductibilité
et de la linéarité a consisté à extraire et à doser chaque
jour et pendant 5 jours une gamme d'étalonnage à 0, 10, 20, 50,
100, 200, 500 et 1 000 ng/ml dans le sang total. La limite de
quantification est la plus faible concentration pour laquelle le
coefficient de variation (CV) et le défaut de justesse sont
inférieurs à 20 %. La limite de détection a été évaluée
comme la plus faible concentration donnant un pic
chromatographique supérieur ou égal à 5 fois le bruit de fond.
Résultats
et discussion
La méthode d'extraction liquide-liquide proposée n'a pu faire
l'économie d'étapes d'évaporation, opération délicate pour
des molécules aussi volatiles que ces amphétamines. Une des
techniques utilisées avant la présente mise au point était
pourtant basée sur une triple extraction liquide/liquide sans
évaporation; cette procédure n'a pas pu être retenue, car elle
donnait des rendements d'extraction faibles. Dans la méthode
standard, l'évaporation des analytes est minimisée en les
ionisant au préalable et en ralentissant l'évaporation du
solvant (raison de l'ajout d'isopropanol acidifié) mais aussi en
interrompant le flux d'azote dès que cette opération est totale. Moyennant ces précautions,
les rendements d'extraction sont très satisfaisants (tableau
11).
Trois des quatre techniques de base utilisaient une dérivation
par le HFBA, également retenue ici. Cette réaction et surtout
les évaporations doivent impérativement être pratiquées sous
une hotte d'aspiration, le produit étant nauséabond et toxique.
Dans les conditions chromotographiques décrites, I'amphétamine,
la méthamphétamine, la MDA, la MDMA et la MDEA sont
parfaitement séparées (tableau 1) et ne souffrent pas
d'interférence d'autres molécules amphétaminiques, en
particulier de l'éphédrine et de la pseudoéphédrine (TR =
8,44 et 8,73 mn, respectivement) connues pour générer des
artéfacts de spectre identique à celui de la méthamphétamine
(3).
Un chromatogramme reconstitué sur l'ion de quantification et les
ions de confirmation, correspondant à un standard à 100 ng/ml
extrait, est représenté pour chaque analyte dans la figure 1.
Les limites de détection sont
les suivantes: AM = 1 ng/ml, MA = 2 ng/ml, MDA = 8 ng/ml, MDMA =
1 ng/ml, MDEA = 0,5 ng/ml.
Les limites de quantification,
constatées d'après les résultats de l'étude de
reproductibilité (tableau II) sont de 10 ng/ml pour AM, MDMA et
MDEA, de 20 ng/ml pour MA et de 50 ng/ml pour MDA.
Les linéarités sont
excellentes, de la limite de quantification jusqu'à 1000 ng/ml,
pour les cinq amphétamines étudiées.La répétabilité est
également satisfaisante pour toutes.
Références
(1) Kintz P., Cirimele V., Tracqui A., Mangin P.
Simultaneous
determination of amphetamine, methamphetamine, 3,4
methylenedioxyamphetamine et 3,4 methylenedioxymethamphetamine in
human hair by gas chromatography-massspectrometry
J. Chromatogr., 1995, 670, 162.
(2) Franceschini A., Duthel J. M.,Vallon J.J
Détection
spécifique par chromatographie gazeuse - spectrométrie de masse des amines
sympathomimétiques urinaires dans le cadre de contrôles
anti-dopages.
J. Chromatogr., 1991, 541, 109.
(3) Wu A.H.B., Wong S.S., Johnson K.Ballatore A., Seifert WE.
The
conversion of ephedrine to methamphetamine
and methampltamine-like compounds during and prior to gas
chromatographic/massspectrometric analysis of CB and
HFBderivatives.
Biol. Mass Spectrom., 1992,21,278.
Tableau I:
Temps de
rétention et rapports m/z de quantification et de confirmation
utilisés pour les cinq analytes et leurs étalons internes
| Composé |
Temps
de rétention (mn) |
Ion de
quantification (u.m.a.) |
ions de
confirmation (u.m.a.) |
AM
- D5 (E.l.)
AM
|
7.50
7.52
|
244
240
|
-
118 - 91
|
MA
- D5 (E.l.)
M.A.
|
8,24
8,26
|
258
254
|
-
210 - 169 - 91
|
MDA-D5
(E.l.)
MDA
|
9,51
9,52
|
380
375
|
-
240 - 162 - 135
|
MDMA-D5
(E.l.)
MDMA
|
10,17
10,19
|
258
254
|
-
389 - 210 - 162
|
MDEA-D5
(E.l.)
MDEA
|
10,42
10,44
|
273
268
|
-
403 - 240
|
AM = amphétamine; MA =
méthomphétamine; MDA = méthylènedioxyamphétamine
MDMA = méthylènedioxyméthamphétamine; MDEA =
méthylèdioxyéthylamphétamine
Tableau II:
Résultats de
validation de la méthode de dosage des amphétamines dans le
sang total par CPG/SM
| |
Etude de
reproductibilité
|
COMPOSÉS
Concentration
ajoutée
(ng/ml)
|
Rendement
d'extraction
(%)
|
Répétabilité
(n = 5)
C.V.(%)
|
Moyenne (ng/ml)
|
C.V.(%)
|
Défaut de justesse
(%)
|
AM
|
|
10
20
50
100
200
500
1000
|
-
-
-
85.2
-
-
-
|
-
11.9
-
-
-
11.0
-
|
10,9
19,7
50,8
99,4
206,1
492,6
997,9
r = 0,99675
|
15,2
17,0
7,2
9,2
10,9
8,3
2,0
|
9,0
1,4
1,7
0,6
3,1
1,5
0,2
|
MA
|
|
10
20
50
100
200
500
1000
|
-
-
-
90.9
-
-
-
|
-
12,7
-
-
-
4,8
-
|
11,7
22,4
50,9
98,7
190,5
461,0
981,1
r = 0,99025
|
22,5
17,9
6,8
5,9
3,4
11,5
2,9
|
17,3
12,1
1,8
1,3
4,7
7,8
1,9
|
MDA
|
|
10
20
50
100
200
500
1000
|
-
-
-
76.5
-
-
-
|
-
9,9
-
-
-
8,7
-
|
11,85
21,4
45,3
102,7
176,1
552,3
1001,5
r = 0,98500
|
42,2
27,2
7,9
4,9
12,1
9,5
2,6
|
18.5
7
9,4
2,7
11,9
10,5
0.2
|
MDMA
|
|
10
20
50
100
200
500
1000
|
-
-
-
84.1
-
-
-
|
-
5,1
-
-
-
9,4
-
|
9,3
20,5
47,9
102,1
186,1
526,7
1001,8
r = 0.99925
|
10,8
9,1
8.6
5,6
5,8
10,1
1,0
|
7,3
2,5
4.2
2,1
7,0
5,3
0,2
|
MDEA
|
|
10
20
50
100
200
500
1000
|
-
-
-
63.6
-
-
-
|
-
5,0
-
-
-
2,1
-
|
8,88
20,9
46,9
102,1
188,6
505,5
1002,3
r = 0,99875
|
13,0
9,3
3,6
3,4
5,7
2,2
1,9
|
11,2
4,5
2,3
2,1
5,7
1,1
0,2
|
Figure
1: voir toxicorama n°2 de
1996
chromatogrammes
reconstitués d'après l'ion de quantification et les ions de
confirmation de l'amphétamine, la méthamphétamine, la MDA, la
MDMA et la MDEA, obtenus à partir d'un extrait de sang total
surchargé à 100 ng/ml.
|